Advances in Clinical and Experimental Medicine

Title abbreviation: Adv Clin Exp Med
JCR Impact Factor (IF) – 2.1 (5-Year IF – 2.0)
Journal Citation Indicator (JCI) (2023) – 0.4
Scopus CiteScore – 3.7 (CiteScore Tracker – 4.0)
Index Copernicus  – 171.00; MNiSW – 70 pts

ISSN 1899–5276 (print)
ISSN 2451-2680 (online)
Periodicity – monthly

Download original text (EN)

Advances in Clinical and Experimental Medicine

2008, vol. 17, nr 3, May-June, p. 269–273

Publication type: original article

Language: English

Rat Liver Catalase Protection from α−Amanitin in Extracorporeal Liver Perfusion

Ochrona katalazy hepatocytów szczura przed działaniem α−amanityny w modelu pozaustrojowej perfuzji wątroby

Jan Magdalan1,, Ewa Chlebda1,, Joanna Kwiatkowska1,

1 Department of Pharmacology, Silesian Piasts University of Medicine in Wroclaw, Poland

Abstract

Background. Death in death cap toadstool (Amanita phalloides) poisoning is caused principally by acute failure of the liver, which takes up 57% of circulating amanitins. α−Amanitin – the main toxin of this mushroom – binds to RPB1 subunit of RNA polymerase II, thereby blocking synthesis of cellular enzymes, moreover α−amanitin inhibits catalase activity and increases free radicals generation in hepatocytes leading to cell death.
Objectives. The aim of this study was to investigate the potential protective effect of amanitin uptake inhibitors on catalase activity in α−amanitin exposed rat hepatocytes.
Material and Methods. The experiment was performed using extracorporeal liver perfusion on 80 Wistar rats divided into following groups: control group C0 (perfusion fluid without α−amanitin and without inhibitors), control group C, and 6 treatment groups (I–VI). In groups C and I–VI perfusion fluid was supplemented with α−amanitin at 25 ng/ml, while treatment groups were perfused with the fluid containing also potential inhibitors of α−amanitin uptake at the following concentrations: I. penicillin G 0.5 mM; II. rifamycin SV 10.0 μM; III. silibinin 20.0 μM; IV. acetylcysteine 1.0 mM; V. β−estradiol−17−β−D−glucuronide 320 μM; VI. taurocholate sodium 270 μM.
Results. Catalase activity in α−amanitin−exposed hepatocytes after 2−hours extracorporeal rat liver perfusion was significantly inhibited in comparison to the catalase activity in the unexposed hepatocytes. As catalase protectors from α−amanitin−induced inactivation act only these substances which exert inhibitory effect on α−amanitin uptake by the rat liver (groups II–VI).
Conclusion. The protection of catalase is probably not a result of direct influence on the enzyme, but it results only from inhibiting of α−amanitin influx into hepatocytes.

Streszczenie

Wprowadzenie. Śmierć w zatruciu muchomorem sromotnikowym (Amanita phalloides) jest wynikiem ostrej niewydolności wątroby, która wychwytuje aż 57% krążących we krwi amanityn. α−Amanityna – główna toksyna tego grzyba – łączy się z podjednostką RPB1 polimerazy II RNA, przez co blokuje syntezę enzymów komórkowych, α−amanityna ponadto hamuje aktywność katalazy, zwiększając powstawanie wolnych rodników, co prowadzi do śmierci komórki.
Cel pracy. Określenie, czy substancje hamujące wątrobowy wychwyt α−amanityny mogą ochronić katalazę hepatocytów szczura przed inaktywacją.
Materiał i metody. Badania przeprowadzono z użyciem pozaustrojowej perfuzji wątroby na 80 szczurach szczepu Wistar podzielonych na następujące grupy: grupa kontrolna C0 (płyn perfuzyjny bez α−amanityny i bez inhibitorów jej wychwytu), grupa kontrolna C oraz 6 grup badanych (I–VI). W grupach C oraz I–VI do płynu perfuzyjnego dodawano α−amanitynę w stężeniu 25 ng/ml, w grupach badanych płyn perfuzyjny zawierał dodatkowo potencjalne inhibitory wątrobowego wychwytu α−amanityny w następujących stężeniach: I penicylina G 0.5 mM; II ryfamycyna SV 10.0 μM; III silibinina 20.0 μM; IV acetylocysteina 1.0 mM; V glukuronian 17−β−D−estradiolu 320 μM; VI taurocholan sodu 270 μM.
Wyniki. Aktywność katalazy w hepatocytach szczura eksponowanych na α−amanitynę podczas 2−godzinnej pozaustrojowej perfuzji wątroby była istotnie mniejsza niż aktywność katalazy w hepatocytach nieeksponowanych. Ochronne działanie na katalazę hepatocytów szczura eksponowanych na α−amanitynę wykazano tylko dla tych substancji, które we wcześniejszych badaniach okazały się inhibitorami wątrobowego wychwytu tej toksyny (grupy II–VI).
Wnioski. Ochrona katalazy hepatocytów szczura przed inaktywacją wynika najprawdopodobniej nie z bezpośredniego oddziaływania użytych substancji na enzym, lecz jedynie z blokowania napływu α−amanityny do komórek.

Key words

α−amanitin, catalase, rat, hepatocytes, extracorporeal liver perfusion

Słowa kluczowe

α−amanityna, katalaza, szczur, hepatocyty, pozaustrojowa perfuzja wątroby

References (18)

  1. Schneider SM: Mushrooms In: Clinical Toxicology. Eds.: Ford MD, Delaney KA, Ling LJ, Erickson WB, Saunders Company, Philadelphia, London, New York, St. Louis, Sydney, Toronto 2001, 1st ed, 899–909.
  2. Enjalbert A, Rapior S, Nouguier−Soule J, Guillon S, Amoroux N, Cabot C: Treatment of Amatoxin Poisoning: 20−Year Retrospective Analysis. J Toxicol Clin Toxicol 2002, 40, 715–757.
  3. Letschert K, Faulstich H, Keller D, Keppler D: Molecular characterization and inhibition of amanitin uptake into human hepatocytes. Toxicol Sci 2006, 9, 140–149.
  4. Cattori V, van Montfoort JE, Stieger B, Landmann L, Meijer DKF, Winterhalter KH, Meier PJ, Hagenbuch B: Localization of organic anion transporting polypeptide 4 (Oatp4) in rat liver and Comparison of its Substrate Specificity with Oatp1, Oatp2, and Oatp3. Pflügers Arch – Europ J Physiol 2001, 443, 188–195.
  5. Gundala S, Wells LD, Milliano MT, Talkad V, Luxon BA, Neuschwander−Tetri BA: The hepatocellular bile acid transporter Ntcp facilitates uptake of the lethal mushroom toxin α−amanitin. Arch Toxicol 2004, 78, 68–73.
  6. Nguyen V, Giannoni F, Dubois M, Seo S, Vigneron M, Kedinger C, Bensaude O: In vivo degradation of RNA polymerase II largest subunit triggered by alpha−amanitin. Nucleic Acids Res 1996, 24, 2924–2929.
  7. Rudd M, Luse D: Amanitin greatly reduces the rate of transcription by RNA polymerase II ternary complexes but fails to inhibit some transcript cleavage modes. J Biol Chem 1996, 271, 21549–21558.
  8. Zheleva A, Gadjeva V, Zhelev M: Free radical formation might contribute to the severe amatoxin hepatotoxicity. Trakia J Sci 2003, 1, 42–45.
  9. Zheleva A, Tolekova A, Zhelev M, Dobreva Z, Halacheva K, Popova S: In vivo antioxidant and prooxidant properties of Amanita phalloides mushroom toxins. Trakia J Sci 2005, 3, 34–38.
  10. Zheleva A, Tolekova A, Zhelev M, Uzunova V, Platikanova M, Gadzheva V: Free radical reactions might contribute to severe alpha amanitin hepatotoxicity – A hypotesis. Med Hypothes 2007, 69, 361–367.
  11. Magdalan J, Pieśniewska M, Gliniak H: The inhibition of α−amanitin uptake in the perfused rat liver. Adv Clin Exp Med 2007, 16, 355–360.
  12. Kröncke K, Fricker G, Meier P, Gerok W, Wieland T, Kurz G: α−Amanitin uptake into hepatocytes. Identification of hepatic membrane transport systems used by amatoxins. J Biol Chem 1986, 26, 12562–12567.
  13. Heilmeyer W, Plempel M, Otten H: Antibiotika−Fibel. Antibiotika und Chemotherapie. Georg Theme Verlag, Stuttgart 1969, 3 Auflage, 147–326.
  14. Johanson LH, Borg HLA: A spectrophotometric method for determination of catalase activity in small tissue sample. Anal Biochem 1988, 174, 331–336.
  15. Morikofer−Zwez S, Cantz M, Kaufmann H, von Wartburg JP, Aebi H: Heterogeneity of erythrocyte catalase. Correlations between sulfhydryl group content, chromatographic and electrophoretic properties. Eur J Biochem 1969, 11, 49–57.
  16. Boon EM, Downs A, Marcey D: Catalase: H202: H202 Oxidoreductase. Reviews on structure and function of catalases. In: Biomolecules at Kenyon, 1997. www.callutheran.edu/Academic_Programs/Departments/BioDev/omm/catalase.
  17. Attri S, Rana SV, Vaiphei K, Sodhi CP, Katyal R, Goel RC, Nain CK, Singh K: Isoniazidand rifampicininduced oxidative hepatic injury−protection by N−acetylcysteine. Hum Exp Toxicol 2000, 19, 517–522.
  18. Basaga H, Poli G, Tekkaya C, Aras I: Free radical scavenging and antioxidative properties of ‘silibin’ complexes on microsomal lipid peroxidation. Cell Biochem Funct 1997, 15, 27–33.